Journal of Reproduction & Infertility

Journal of Reproduction & Infertility

Evaluating the effects of Atorvastatin on cultured human endometrium in a three-dimensional fibrin matrix

Authors
Reproduction Research Center, Kermanshah University of Medical Sciences, Kermanshah, Iran
Abstract
Introduction: Endometriosis, as one of the main causes of infertility in women, has devoted a lot of research to itself. Three-dimensional culture of human endometrial tissue has been known as a functional model for endometriosis. Statins have a variety of different effects on angiogenesis and they have been suggested as a candidate for the inhibition of this disease. Therefore, the aim of the present study is to determine inhibitory or promotory effects of different concentrations of Atorvastatin on the growth of cultured human endometrium. Materials & Methods: 8 endometrial samples were cut into 1x1 mm pieces and were cultured in 24-well culture plates. To establish the desired three-dimensional model, 0.5 ml of fibrinogen solution in M199 medium, with a concentration of 3mg/ml and 10µL of thrombin were added to each well. After formation of the jelly, the endometrial fragments were placed on it and a second jelly layer was added. The endometrial tissue of each specimen was cultured in four 5-piece layers. The first row was regarded as control and to the second, third and forth rows, 0.1, 1.0 and 10µM concentrations of the medication were added respectively. Every 3 days, endometrial pieces and their probable changes were observed by an invert microscope (Motic-AE31) and the culture media were changed. The tissue fragments were also photographed on days 1, 7, 14 and 21. At the end of the study, the cultures were graded according to their cellular outgrowths, invasion of deposited cells into the jelly and growth of endometrial glands and images related to the 3-D cultures were analyzed. To confirm the growth of cellular structures into the jelly, paraffin embedded cuts of the cultured specimen were immunohistochemically stained by anti-vimentin, anticytokeratin and anti-CD31. The data were analyzed by SPSS statistical software (Version 11.5). The statistical analysis related to the grading of wells was done by Freedman test and the statistical analysis of the images was performed by one-way ANOVA. Results: Growth changes were 82.5% in the control group and 87.5% in the 0.1µM concentration group, depicting significantly higher values compared to the control group (p < 0.05). The changes in 1µM and in 10µM groups were 50% and 5% respectively which had significant differences with that of the control group (p < 0.001). Conclusion: Different concentrations of Atorvastatin have different effects on the growth of cultured endometrial tissue, 0.1µM concentration increases growth of cultured human endomet-rium, while 1µM and 10µM can decrease growth of the tissue. Further animal studies on this subject are suggested.
Keywords

زمینه و هدف

اندومتریوز ضایعه‌ای است که با وجود غدد و سلول‌های استرومای اندومتر در خارج از حفره رحمی مشخص می‌شود (1). این بیماری از شایع‌ترین اختلالات زنان و مامایی است که حداقل 10% زنان در سنین باروری و 50% زنان نابارور به آن مبتلا می‌شوند (2). تاکنون هیچ درمان دارویی یا جراحی جهت ریشه‌کنی این بیماری بدون داشتن عوارض جانبی شناخته نشده است (3). جراحی به عنوان خط اول درمان به منظور از بین بردن ضایعات اندومتریوزی می‌باشد. اما در 47% از بیماران عود مجدد بیماری پس از جراحی گزارش شده است (4).

از بین تئوری‌های مختلفی که در زمینه پاتوژنز این بیماری بیان شده‌ است، تئوری بازگشت خون قاعدگی از طریق لوله‌های رحمی به حفره صفاقی بیش از سایرین مورد تأیید قرار گرفته است (5). قطعات بافت اندومتر در حفره صفاقی دو رفتار اساسی را از خود نشان می‌د‌هند که عبارت از لانه‌گزینی و ایجاد عروق خونی جدید از طریق فرآیند رگ‌زایی می‌باشد (6).

اندومتریوز در انسان و پریمات‌‌های نزدیک به انسان که دارای قاعدگی هستند دیده می‌شود. بنابراین مطالعه و بررسی علمی در مورد این بیماری، خصوصاً شناسایی مراحل اولیه ایجاد و تثبیت آن با مشکلات متعددی همراه است. بدین منظورتحقیقات فراوانی جهت ابداع مدلی که قادر به تقلید مراحل ابتدایی بیماری اندومتریوز باشد صورت گرفته است.

Fascianiو همکاران مدل کشت سه بعدی قطعات بافت اندومتر تکثیری را در زمینه فیبرینی معرفی کردند و با توجه به تکثیر سلول‌های استروما، ایجاد غدد و عروق جدید، آنرا به عنوان مدل مناسبی برای مطالعه مراحل اولیه اندومتریوز معرفی کردند (7). سپس خزاعی و همکاران ثابت کردند که قطعات بافت اندومتر فاز ترشحی نیز توانایی تکثیر، رشد، تجدید ساختار و رگ‌زایی در زمینه سه بعدی فیبرینی را داشته و کشت اندومتر ترشحی، سازگاری بیشتری با پاتوژنز اندومتریوز دارد (8). همچنین آنها با کشت سلول‌های اندومتر انسانی در زمینه سه بعدی فیبرینی در همین رابطه، موفق به ایجاد شبکه ظریف مویرگی شدند (9). با توجه به این مسئله که اندومتریوز از دسته بیماری‌های مرتبط با آنژیوژنز می‌باشد، به نظر می‌رسد استفاده از ترکیباتی که قادر به مهار فرآیند آنژیوژنز می‌باشند دارای اثراتی بر این بیماری خواهد بود.

از جمله ترکیبات دارویی که تأثیرات آنها بر فرآیند رگ‌زایی مورد بررسی قرار گرفته است، استاتینها می‌باشند. دسته دارویی مهارکننده آنزیم 3ـ هیدروکسی 3- متیل گلوتاریل کوآنزیم A ردوکتاز (HMG-Co A) که به استاتینها معروف هستند، به طور وسیعی جهت درمان افزایش کلسترول خون مورد استفاده قرار می‌گیرند (10). این داروها مسیر تبدیل موالونات به HMG-CoA را مهار می‌کنند و در نتیجه تولید کلسترول را کاهش می‌دهند (11).

تحقیقات نشان داده‌اند که استاتینها علاوه بر اثرات کاهش دهنده سطح چربی خون دارای تاثیرات وسیعی بر فرایند التهاب و رگ‌زایی می‌باشند (12). به نظر می‌رسد که استاتینها به طور بالقوه دارای اثرات دوگانه‌ای بر فرایند آنژیوژنز باشند.Laufs و همکاران گزارش کردند که دوزهای پایین استاتین از طریق افزایش تولید اکسیدنیتریک (NO) منجر به تحریک رگ‌زایی می‌شوند؛ در حالی که این ترکیبات در دوزهای بالا prenylation پروتئینها را کاهش داده و باعث مهار رشد سلولی می‌شوند (13). براساس مطالعه‌ اسفندیاری و همکاران داروی لوواستاتین در غلظت‌های M1، M5 و M10 قادر به مهار پدیده آنژیوژنز می‌باشد؛ اما مهار رشد و تکثیر سلولی فقط در دوزهای M5 و M10 رخ می‌دهد (14).

آتورواستاتین (Lipitor, Pfizer) از دیگر ترکیبات خانواده استاتینها می‌باشد که نسبت به سایر اعضای این خانواده دارای عوارض جانبی کمتر و اثر بخشی بیشتری می‌باشد (15). این دارو علاوه بر کاهش سطح کلسترول سرم، طیفی از اثرات ضد التهابی، ضد انعقادی و تثبیت ضایعات آترواسکلروزی را نیز دارا می‌باشد (16).

با توجه به مشکلات موجود در مطالعات انسانی و مسائل مربوط به نگهداری و ایجاد اندومتریوز تجربی در مدل‌های حیوانی نزدیک به انسان (پریماتها)، استفاده از کشت سه بعدی بافت اندومتر در زمینه فیبرینی می‌تواند مدل مناسبی برای بررسی اثر داروها و عوامل مؤثر بر بیماری اندومتریوز باشد. علت انتخاب زمینه فیبرینی، وجود فیبرین در مایع صفاقی بیماران مبتلا به اندومتریوز به عنوان زمینه خارج سلولی مورد نیاز سلول‌های اندومتری می‌باشد. در مطالعه حاضر، تأثیر غلظت‌های مختلف داروی آتورواستاتین بر کشت بافت اندومتر انسانی در زمینه سه بعدی فیبرینی مورد بررسی قرار گرفته است.

روش بررسی

جمع‌آوری نمونه‌ها: نمونه‌های مورد استفاده برای کشت بافت اندومتر از 8 بیماری که در سن باروری بودند و به منظور درمان بیماری‌های خوش‌خیم رحمی مانند فیبروم یا میوم در مرکز آموزشی‌ـ درمانی معتضدی کرمانشاه تحت جراحی هیسترکتومی قرار گرفته بودند تهیه گردید. معیارهای خروج از مطالعه شامل بدخیمی‌های اندومتر (پولیپها، هایپر پلازی و سرطان)، مصرف هورمون، درمان با آگونیست‌های GnRH یا استفاده از دستگاه داخل رحمی (IUD) طی سه ماه قبل از جراحی بود. قبل از اقدام به هیسترکتومی فرم رضایت‌نامه توسط کلیه بیماران کامل گردید.

کشت بافت اندومتر: قطعات بافت اندومتراز رحم‌های هیسترکتومی شده برداشته شد و چندین مرتبه با محلولHank's (Sigma, Germany) استریل و دارای آنتی‌بیوتیک شستشو داده شد و از هر نمونه 20 قطعه mm11 مناسب تهیه گردید. قطعات بافتی در ظروف کشت 24 خانه (Nunclon, Denmark) و بین دو لایه ژل فیبرینی کاشته شدند. در ابتدا به هر خانه این ظرف، ml5/0 محلول فیبرینوژن (Sigma, Germany) mg/ml 3 حل شده در محیط کشت M199 (GIBCO, Germany) و l10 ترومبین (Sigma, Germany) اضافه گردید. ظروف کشت در انکوباتور (Memmert, Germany) با درجه حرارت ºC37، O2 95%، CO2 5% و رطوبت 95% قرار داده شدند. پس از تشکیل ژل فیبرین، قطعات بافت اندومتر در سطح هر خانه قرار داده شد و لایه دوم محلول فیبرینوژن و ترومبین به آن اضافه شد. در هر ظرف کشت، چاهک‌های ردیف اول به عنوان گروه کنترل، ردیف دوم گروه M 1/0، ردیف سوم گروه M1 و ردیف چهارم به عنوان گروه M10 در نظر گرفته شد. خانه‌های کنترل ml 1 از محیط کشت M199 حاویFBS به میزان 5% (GIBCO, Germany)، e-aminocaproic acid به میزان 1/0% (Sigma, Germany)،L-glutamin با غلظت mM2 (GIBCO, Germany)، بی‌کربنات سدیم با غلظت gr2/2 (Merck, Germany) و آنتی‌بیوتیک (آمفوتریسین g/ml5/2، پنی‌سیلین IU/ml G 50 و استرپتومایسین g/ml50) (GIBCO, Germany) و گروه‌های آزمایش به ترتیب دوزهای M1/0، M1 و M10 آتورواستاتین را دریافت نمودند. ظروف کشت طی دوره مطالعه در انکوباتور نگهداری شدند. هر 72 ساعت یکبار، تعویض محیط کشت مربوط به تمامی گروه‌های کنترل و دارو صورت گرفت و بافت‌های کشت داده شده توسط میکروسکوپ معکوس (Motic-AE31, Spain) و با بزرگنمایی‌های مختلف مورد بررسی قرار گرفت و تغییرات ایجاد شده در بافتها شامل ظاهر بافت اصلی، رسوب سلولی، ایجاد زوائد بافتی، رشد و تغییر شکل ایجاد شده در توده اصلی و ایجاد توده‌های غده‌ای شکل نیز ثبت شدند. در آخرین روز مطالعه (روز بیست و یکم)، طبق جدول معیارها (جدول 1) نمره‌دهی بافتها توسط دو نفر به صورت مجزا انجام و میانگین نمرات مورد استفاده قرار گرفت. نمره دهی بر اساس مشاهده تغییرات مربوط به توده اصلی بافت، رشد و ایجاد زوائد سلولی، جداشدن سلول ها از توده اصلی و ایجاد رسوب سلولی، رشد و توسعه غدد اندومتری، تغییر شکل سلول های استروما و اپی تلیال و هجوم سلول‌های اندومتر به ژل فیبرینی در هر چاهک کشت انجام شد.

آنالیز تصاویر: تصاویر حاصل از قطعات بافت اندومتر با استفاده از نرم افزار تحلیل گر Motic مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. با استفاده از این نرم افزار، ابتدا مساحت بافت کشت داده شده اصلی اندازه‌گیری شد و در ادامه مساحت کل زوائد بافتی که در اطراف بافت اصلی رشد نمودند محاسبه گردید. به منظور به دست آوردن شاخص رشد زوائد از فرمول زیر استفاده شد:

شاخص رشد زوائد= (مساحت کل زوائد بافتی‌ـ مساحت بافت کشت داده شده اصلی) (7).

رنگ آمیزی ایمونو هیستوشیمی: پس از پایان دوره مطالعه، قطعات بافت اندومتر که در بین دو لایه ژل فیبرین قرار گرفته بودند از خانه‌های کشت خارج شده و در محلول پارافرمالدئید 4% قرار داده شدند. در ادامه به منظور بررسی ساختار بافتی، فرآیند آماده‌سازی و قالب‌گیری انجام گردید و سپس مقاطع پارافینی 7-5 میکرونی از آنها تهیه و لامها با روش هماتوکسیلین‌ـ ائوزین رنگ‌آمیزی شدند. همچنین تعدادی از برش‌های پارافینی به منظور تائید ساختار های سلولی رشد یافته درون ژل فیبرین، با روش ایمونوهیستوشیمی و با آنتی‌ویمنتین (شاخص سلول‌های ا سترومای اندومتر)، آنتی سیتوکراتین (شاخص سلول‌های اپی‌تلیال) و آنتی CD31 (شاخص سلول‌های آندوتلیال) رنگ‌آمیزی شدند .

آنالیز آماری: داده‌ها با استفاده از نرم افزار آماری SPSS (نسخة 5/11) مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. داده‌های حاصل از آنالیز عکسها توسط آزمون آماری ANOVA یکطرفه و آزمون Tukeys Post Hoc و داده‌های مربوط به نمره‌دهی بافتها توسط آزمون فریدمن مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. در تمامی گروه‌ها، 05/0p< به عنوان اختلاف معنی‌دار در نظر گرفته شد.

نتایج

مهمترین تغییرات بافتی که طی هفته اول در بافتها مشاهده شد، شامل رشد زوائد بافتی و هجوم سلولها به داخل ژل فیبرین و تشکیل انشعابات سلولی طویل بود (شکل 1- الف و ب). نکته قابل توجه در انتهای هفته اول وجود بیرون زدگی‌های شعاعی در اطراف بافت اصلی (شکل 2) در 5/92% از خانه‌های گروه کنترل بود. ساختارهای مشابه در 5/82% در گروه M 1/0، 50% در گروه M1 و 5% در گروه M10 مشاهده شد (شکل 2).

طی هفته دوم، سلول‌های رسوب یافته کم کم حالت کلونی‌های سلولی منظم را به خود گرفتند که دارای ساختار غده‌ای شکل بودند و زوائد بافتی هم بیش از پیش رشد نموده و طویل شده بودند (شکل 1، ج). در طی هفته سوم رشد، تغییر قابل توجهی شامل رشد سلول‌های استرومای دوکی و ستاره‌ای شکل در اطراف بافت اصلی مشاهده شد (شکل 1، د). در گروه M1و M10 رشد بافتها تنها محدود به شکل‌گیری رسوبات سلولی در اطراف بافت اصلی بود که بر خلاف گروه کنترل و M1/0 این رسوبات در ادامه رشد حالت غده‌ای شکل به خود نگرفته و رشد آنها متوقف گردید.

آنالیز آماری داده‌های حاصل از نمره‌دهی بافتها (جدول 2) نشان داد میانگین نمرات گروه کنترل برابر با 84/0 1/3، گروه Mµ1/0 برابر با 85/0 43/3 در گروه Mµ1 برابر با 16/14/2 و گروه M10 برابر با 49/0 73/0 بود. همانطور که در این جدول مشاهده می‌شود، میانگین نمرات مربوط به گروه Mµ1/0 از سایر گروه‌ها و حتی از گروه کنترل بالاتر می‌باشد.

در بخش مربوط به آنالیز تصاویر، متوسط شاخص رشد زوائد بافتی در گروه کنترل با m95/128019، در گروه Mµ1/0 برابر باm 89/131891، در گروه M 1 برابر با m 60/86481 و در گروه Mµ10 برابر باm21/31552 بود (نمودار 1).

این نتایج نشان می‌دهد که غلظت M 1/0 داروی آتورواستاتین، رشد زوائد بافتی را در مقایسه با گروه کنترل به طور معنی‌داری (05/0p<) افزایش می‌دهد؛

در حالی که غلظت Mµ1آتورواستاتین باعث کاهش معنی‌دار میزان رشد زوائد (05/0p<) و غلظت Mµ10 آتورواستاتین نیز به طور معنی داری باعث کاهش میزان رشد زوائد سلولی (001/0 p<) در مقایسه با گروه کنترل می گردد.

همچنین رنگ‌آمیزی ایمونوهیستوشیمی برش‌های پارافینی نشان می‌دهد که کشت قطعات بافت اندومتر با آنتی‌بادی‌های آنتی‌ویمنتین، آنتی‌سیتوکراتین و آنتی CD31 واکنش مثبت دارد ( شکل 3، الف و ب).

بحث

در مطالعه حاضر تأثیر غلظت‌های مختلف داروی آتورواستاتین (Mµ1/0، Mµ1 و Mµ 10) بر بافت اندومتر انسانی کشت داده شده در زمینه سه بعدی فیبرینی مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این مطالعه نشان داد که آتورواستاتین دارای اثرات دوگانه‌ای بر رشد بافت اندومتر می‌باشد، به طوری که این دارو در دوز پایین (Mµ1/0) منجر به افزایش رشد بافت در مقایسه با گروه کنترل می‌شود. اما دوزهای بالاتر آتورواستاتین (Mµ 1 و Mµ 10) رشد را نسبت به گروه کنترل کاهش می‌دهند که این کاهش رشد شامل کاهش تکثیر سلولی و کاهش میزان رگ‌زایی می‌باشد.

فرآیند رگ‌زایی در بافت اندومتر نابجا به عنوان یکی از مکانیزم‌های مهم در پاتوژنز بیماری اندومتریوز شناخته شده است (9). درمان‌های دارویی جدید بیماری اندومتریوز براساس استفاده از ترکیباتی بنیان شده‌اند که قادر به مهار پدیده رگ‌زایی باشند. مطالعات موجود در زمینه تأثیر استاتینها بر پدیده رگ‌زایی تا حدودی متضاد می‌باشد.

Vincent و همکاران بیان کردند استاتینها قادر به کاهش تکثیر سلول‌های آندوتلیال و مهاجرت آنها می‌باشند (16)؛ در حالی که Kureishi و همکاران گزارش کردند داروی سیمواستاتین محرک پدیده رگ زایی می‌باشد که احتمالاً از طریق فعال‌سازی فاکتور پروتئین کینازAkt/Pk B سلول‌های آندوتلیال این اثر را اعمال می‌کنند (17).

Weis و همکاران گزارش کردند که استاتینها دارای اثرات وابسته به دوز دوگانه‌ای در رگ‌زایی هستند که به صورت مستقل از تأثیر این ترکیبات بر میزان چربی خون می‌باشد. آنها بیان کردند تکثیر، مهاجرت و تمایز سلول‌های آندوتلیال در غلظت‌های پایین (Mµ 01/0-005/0) استاتینها افزایش یافته اما به طور مشخصی در غلظت‌های بالا (Mµ 1- 005/0) کاهش می‌یابد. همچنین این محققین بیان کردند که اثرات ضد رگ‌زایی استاتینها در غلظت‌های بالا در ارتباط با کاهش ترشح VEGF از سلول‌های آندوتلیال و همچنین افزایش آپوپتوز در این سلولها می‌باشد (18). نتیجه به دست آمده از مطالعه Weis و همکاران با نتیجه مطالعه ما مشابه است،لازم به ذکر است که در مطالعهWeis اثرات استاتین ها بر سلول های اندوتلیال بررسی شده است که احتمالا همین امر علت اختلاف دوز دارویی به کار گرفته شده می باشد. Rorowski و همکاران بیان کردند که استاتینها دارای اثرات پیش‌رگزایی بوده که منجر به تحریک رشد عروق جدید می‌شوند و همچنین تولید اکسیدنیتریک (NO) توسط سلول‌های آندوتلیال را افزایش می‌دهند (19).

Walterو همکاران بیان کردند که استاتینها باعث حرکت و تمایز سلول‌های اجدادی آندوتلیال مشتق شده از مغز استخوان می‌شوند که رگزایی و ایجاد پوشش آندوتلیالی مجدد را سبب می‌شود (20). اسفندیاری و همکاران در طی مطالعه مشابهی غلظت‌های M1، M5 و M10 داروی لوواستاتین را بر کشت بافت اندومتر انسانی نشان دادند. آنها بیان کردند که داروی لوواستاتین در غلظت‌های ذکر شده دارای اثرات مهارکننده رشد بافت اندومتر می‌باشد و هیچگونه اثر دوگانه‌ای را گزارش نکردند (14). درحالی که در مطالعه حاضر نشان داده شد که داروی آتورواستاتین دارای تأثیرات وابسته به دوز دوگانه‌ای بر رشد بافت اندومتر انسانی در محیط کشت سه بعدی فیبرین می‌باشد. با توجه به این نتایج به نظر می‌رسد که استفاده از استاتینها به عنوان داروی جدید جهت درمان بیماری اندومتریوز قادر به مهار رشد بافت اندومتر نابجا باشد.

از طرف دیگر اندومتریوز بیماری وابسته به استروژن می‌باشد (22) و همانطور که قبلاً اشاره شد استاتینها منجر به مهار سنتز کلسترول می‌شوند. کلسترول یکی از پیش سازهای لازم جهت ساخت هورمون‌های استروئیدی از جمله استروژن است. با توجه به این مساله می‌توان احتمال داد که استاتینها قادر به کاهش سنتز هورمون استروژن هستند که این می‌تواند یکی از مکانیزم‌های احتمالی دیگر استاتینها در مهار رشد قطعات بافت اندومتر کشت داده شده در زمینه سه بعدی فیبرینی باشد.

نتیجه گیری

استاتینها داروهای رایج در درمان افزایش چربی خون می‌باشند که دارای عوارض جانبی محدودی هستند. احتمال می‌رود که تجویز استاتینها در طی دوره قاعدگی و چند روز پس از این دوره منجر به کاهش فعالیت سلول‌های اندومتر شود که از طریق خون قاعدگی وارد حفره شکمی شده‌اند. این کاهش فعالیت از طریق کاهش تکثیر سلولی و رگ‌زایی می‌باشد. مشاهدات کنونی مبنی بر تعدیل پدیده رگ زایی توسط مهار آنزیم reductase HMG-CoA می‌تواند به عنوان پایه و اساسی برای درمان اندومتریوز و سایر بیماری‌های وابسته به آنژیوژنز توسط این دسته دارویی باشد. مطالعات In vitro و In vivo بیشتری جهت شناسایی تأثیرات بالقوه استاتینها در پیشگیری و مهار پیشرفت بیماری اندومتریوز پیشنهاد می‌شود.

تشکر و قدر دانی

نویسندگان این مقاله تشکر صمیمانه خود را از جناب آقایان دکتر پرویز صیادی و دکتر سید حمید مدنی بابت کمک در انجام پروژه اعلام می‌دارند. همچنین از معاونت محترم آموزشی و پژوهشی دانشگاه به دلیل تصویب این طرح تحقیقاتی و تأمین هزینه آن سپاسگزاری می‌شود.

  1. Lebovic DI, Bentzien F, Chao VA, Garrett ET, Taylor RN. Induction of an angiogenic phenotype in endomet-riotic stromal cell culture by interlukine-1 beta. Mol Hum Reprod. 2000;6:269-75.
  2. Strathy JH, Mdgaard CA, Coulam CB, Melton LJ. Endometriosis and infertility: A laparoscopic study of endometriosis among fertile and infertile women. Fertil Steril. 1982;38:667-72.
  3. Kettle LM, Hummel WP. Modern medical management of endometriosis. Obset Gynecol Clin North Am. 1997; 24:361-73.
  4. Adamson GD, Nelson HP. Surgical treatment of endo-metriosis. Obset Gynecol Clin North Am. 1997;24: 375-409.
  5. Sampson JA. Peritoneal endometriosis due to menstrual dissemination of endometrial tissue into peritoneal cavity. Am J Obset Gynecol. 1927;14:422-9.
  6. Healy DL, Rogers PAW, Hill L, Wingfield M. Angio-genesis: a new theory for endometriosis. Hum Reprod Update. 1998;4(5):736-40.
  7. Fasciani A, Bocci G, Xu J, Bielecki R, Greenblatt E, Leyland N, Casper R C. Three-dimensional in vitro culture of endometrial explants mimics the early stage of endometriosis. Fertil Steril. 2003;80(5):1137-43.
  8. Khazaei M, Esfandiari N, Javed M, Gotlieb L, Casper RC. Successful of human secretory phase endometrium culture as an In vitro model for endometriosis. Fertil Steril. 2004;82(2):S164.
  9. Khazaei M, Esfandiari N, Gotlieb L, Casper RC. Angiogenesis following three-dimensional culture of isolated human endometrial stroma cells. Fertil Steril. 2004; 82 (2): S61.
  10. Lea AP, Mc Tavish D. Atorvastatin. A review of its pharmacology and therapeutic potential in the manage-ment of hyperlipidemias. Drugs. 1997;35(5):828-47.
  11. Graaf MR. The risk of cancer in users of statins. J Clin Oncol. 2004;22(12):2388-94.
  12. Ruiz-Velasco. Statins upregulate CD 36 expressin in human monocytes an affect strengthened when com-bined with PPAR-gamma ligand putative contribution of Rho GTPase in statin-induced CD36 expression. Biochem Pharmacol. 2004;67(2):303-13.
  13. Laufs U. Beyond lipid-lowering: effects of statins on endothelial nitric oxide. Eur J Clin Pharmacol. 2003; 58(11): L719-31.
  14. Esfandiari N, Khazaei M, Ai j, Bielecki R, Gotlieb L, Ryan E, Casper R. Effect of statin on an in vitro model of endometriosis. Fertil Steril. 2006;87(2):257-62.
  15. Wierzbicki AS. Atorvastatin. Expert Opin Pharmaco-ther. 2001;2(5):819-30.
  16. Malinowski JM.: Atorvastatin: a hydroxylmethylgl-utaryl-coenzyme A reductase inhibitpor. Am J Health Syst Pharm. 1998;55(21):2253-67.
  17. Vincent L, Chen W, Hong L. Inhibition of endothelial cell migration by cerivastatin, an HMG-CoA reductase inhibitor: contribution to its anti-angiogenic effect. FEBS Lett. 2001;495:159-66.
  18. Kureishi Y, Luo Z, Shiojima I. The HMG-CoA reduc-tase inhibitor simvastatin activates the protein kinase akt and promotes angiogenesis in normocholeste-rolemic animals. Nat Med. 2000;6:1004-10.
  19. Weis M, Heeschen C, Glassford A, Cooke J. Statins have Biphasic effects on angiogenesis. Circulation. 2002;105:739-46.
  20. Rorowski A, Walsh K. Statin therapy and angiogene-sis. Curr Opin Lipidol. 2003;14(6):599-603.
  21. Walter DH, Zeiher AM, Dimmeler S. Effects of statins on endothelium and their contribution to neovasculariza-tion by mobilization of endothelial progenitor cells. Coron Artery Dis. 2004;15(5):235-242.
  22. Littman BA, Smotrich DB, Stillman RJ. Endometrio-sis; Principal and practice of endocrinology and metabolism, 2nd Edn. Philadelphia JB. Lippincott Com-pany. 1995;906-9.